Western 免疫印跡

Western免疫印跡

    Western Blot采用的是聚丙烯酰胺凝膠電泳，被檢測物是蛋白質，“探針”是抗體(ti) ，“顯色”用標記的二抗。經過PAGE分離的蛋白質樣品，轉移到固相載體(ti) （例如硝酸纖維素薄膜）上，固相載體(ti) 以非共價(jia) 鍵形式吸附蛋白質，且能保持電泳分離的多肽類型及其生物學活性不變。以固相載體(ti) 上的蛋白質或多肽作為(wei) 抗原，與(yu) 對應的抗體(ti) 起免疫反應，再與(yu) 酶或同位素標記的第二抗體(ti) 起反應，經過底物顯色或放射自顯影以檢測電泳分離的特異性目的基因表達的蛋白成分。該技術也廣泛應用於(yu) 檢測蛋白水平的表達。

Western Blot操作步驟
（一）蛋白質樣品獲得：細菌誘導表達後，可通過電泳上樣緩衝(chong) 液直接裂解細胞，真核細胞加勻漿緩衝(chong) 液，機械或超聲波室溫勻漿0.5-1min。然後4℃，13,000g離心15min。取上清液作為(wei) 樣品。
（二）電泳：製備電泳凝膠，進行SDS-PAGE。
（三）轉移：（半幹式轉移）
1、電泳結束後將膠條割至合適大小，用轉膜緩衝(chong) 液平衡，5min×3次。
2、膜處理：預先裁好與(yu) 膠條同樣大小的濾紙和NC膜，浸入轉膜緩衝(chong) 液中10min。
3、轉膜：轉膜裝置從(cong) 下至上依次按陽極碳板、24層濾紙、NC膜、凝膠、24層濾紙、陰極碳板的順序放好，濾紙、凝膠、NC膜精確對齊，每一步去除氣泡，上壓500g重物，將碳板上多餘(yu) 的液體(ti) 吸幹。接通電源,恒流1mA/cm2，轉移1.5hr。轉移結束後，斷開電源將膜取出,割取待測膜條做免疫印跡。將有蛋白標準的條帶染色，放入膜染色液中50s後，在50%甲醇中多次脫色，至背景清晰，然後用雙蒸水洗，風幹夾於(yu) 兩(liang) 層濾紙中保存，留與(yu) 顯色結果作對比。
（四）免疫反應：
1、用0.01M PBS洗膜，5min ×3次。
2、加入包被液，平穩搖動，室溫2hr。
3、棄包被液，用0.01M PBS洗膜，5min×3次。
4、加入一抗（按合適稀釋比例用0.01M PBS稀釋，液體(ti) 必須覆蓋膜的全部），4℃ 放置12hr以上。陰性對照，以1%BSA取代一抗，其餘(yu) 步驟與(yu) 實驗組相同。
5、棄一抗和1%BSA，用0.01M PBS分別洗膜，5min×4次。
6、加入辣根過氧化物酶偶聯的二抗（按合適稀釋比例用0.01M  PBS稀釋），平穩搖動，室溫2hr。
7、棄二抗，用0.01M PBS洗膜，5min×4次。
8、加入顯色液，避光顯色至出現條帶時放入雙蒸水中終止反應。

Western Blot注意事項
1、一抗、二抗的稀釋度、作用時間和溫度對不同的蛋白要經過預實驗確定*條件。
2、顯色液必須新鮮配置使用，zui後加入H2O2。
3、DAB有致癌的潛在可能，操作時要小心仔細。