RNA抽提操作步驟: 1. 勻漿處理:
a.組織 將組織在液氮中磨碎,每50-100mg組織加入1ml TRIzol,用勻漿儀進行勻漿處理。樣品體積不應超過TRIzol體積10℅。
b.單層培養細胞 直接在培養板中加入TRIzol裂解細胞,每10cm2麵積(即3.5cm直徑的培養板)加1ml,用移液器吸打幾次。TRIzol的用量應根據培養板麵積而定,不取決於細胞數。TRIzol加量不足可能導致提取的RNA有DNA汙染。
c.細胞懸液 離心收集細胞,每5-10×106動物、植物、酵母細胞或1×107細菌細胞加入1ml TRIzol,反複吸打。加TRIzol之前不要洗滌細胞以免mRNA降解。一些酵母和細菌細胞需用勻漿儀處理。
2.將勻漿樣品在室溫(15-30℃)放置5分鍾,使核酸蛋白複合物*分離。
3.可選步驟:如樣品中含有較多蛋白質,脂肪,多糖或胞外物質(肌肉,植物結節部分等)可於2-8℃10000×g離心10分鍾,取上清。離心得到的沉澱中包括細胞外膜,多糖,高分子量DNA,上清中含有RNA。處理脂肪組織時,上層有大量油脂應去除。取澄清的勻漿液進行下一步操作。
5. 每使用1ml TRIzol加入0.2ml氯仿,劇烈振蕩15秒,室溫放置3分鍾。
6. 2-8℃10000×g離心15分鍾。樣品分為三層:底層為黃色有機相,上層為無色水相和一個中間層。RNA主要在水相中,水相體積約為所用TRIzol試劑的60℅。
7. 把水相轉移到新管中,如要分離DNA和蛋白質可保留有機相,進一步操作見後。用異丙醇沉澱水相中的RNA。每使用1ml TRIzol加入0.5ml異丙醇,室溫放置10分鍾。
8. 2-8℃10000×g離心10分鍾,離心前看不出RNA沉澱,離心後在管側和管底出現膠狀沉澱。移去上清。
9. 用75℅乙醇洗滌RNA沉澱。每使用1ml TRIzol至少加1ml 75℅乙醇。2-8℃不超過7500×g離心5分鍾,棄上清。
10.室溫放置幹燥或真空抽幹RNA沉澱,大約晾5-10分鍾即可.不要真空離心幹燥,過於幹燥會導致RNA的溶解性大大降低。加入25-200μl無RNase的水或0.5℅SDS,用槍頭吸打幾次,55-60℃放置10分鍾使RNA溶解.如RNA用於酶切反應,勿使用SDS溶液。RNA也可用100℅的去離子甲酰胺溶解,-70℃保存。